產品簡介：

DNase I ，   即 Deoxyribonuclease I ，   即脫氧核糖核酸酶 I ， 是一種可以消化單鏈或雙鏈 DNA 產生單脫氧核苷酸或單鏈或雙鏈的寡脫氧核苷酸的核酸內切酶。DNase I 水解單鏈或雙 鏈 DNA 后的產物， 5'端為磷酸基團，3'端為羥基。

DNase I 活性依賴于鈣離子，   并能被鎂離子或二價錳離子激活 。鎂離子存在條件下， DNase I 可隨機剪切雙鏈 DNA 的任意位點；二價錳離子存在條件下，DNase I  可在同一位點 剪切 DNA 雙鏈，形成平末端， 或 1 -2 個核苷酸突出的粘末端。

特點：不含 RNase (RNase free)， 可以用于各種 RNA 樣品的處理 。提供了用于 DNase I 失活所需的 EDTA。

用途：制備不含 DNA 的 RNA 樣品；RT -PCR 反應前 RNA 樣品中去除基因組 DNA 等可 能的 DNA 污染；體外 T7, T3, SP6 等 RNA Polymerases 催化的 RNA 轉錄后去除 DNA 模板； DNase I footprinting 研究 DNA -蛋白質相互作用； 缺口平移(nicktranslatioin)；  產生 DNA 隨 機片段文庫； 細胞凋亡 TUNEL 檢測中部分剪切基因組 DNA 作為陽性對照。

來源：從牛胰腺純化得到 。分子量： 約  32kDa(單體)。

活性定義：37°C 10 分鐘內，將能夠降解 1 μg pBR322 質粒 DNA 所需的酶量定義為 1 個活性單位。

活性檢測條件：40mM Tris -HCl (pH8.0) ， 10mM MgSO4， 1mM CaCl2 ， 1 μg of pBR322 DNA 。純度：不含其它 DNA 內切酶和外切酶，不含 RNA 酶。

保存條件：

-20°C 保存， 一年內有效。

操作流程：

1 RT -PCR 反應前 RNA 樣品中 DNA 的去除：

1.1 DNA 模板限制性核酸內切酶作用后線性化。酚/氯仿和氯仿/異丙醇提取 DNA，用乙醇沉 淀后， 溶于適量的無菌去離子水中。

1.2  向一無 RNA 酶的 EP 管中依次加入下列試劑：

注意：如需處理較大量的 RNA 樣品， 可以按照比例放大上述反應體系 。如果能在上述反應 體系中加入適量 Ribonuclease inhibitor 以防止 RNA 降解則更佳。

1.3 37°C 孵育 30min。

1.4  向上述反應體系中加入 1 μl 25mM EDTA，65°C 孵育 10min，   以失活 DNase I 。注意：在 沒有鏊合劑如 EDTA 等存在情況下加熱， RNA 可被水解。

1.5 上述加熱處理過的 RNA 樣品即可直接用于處理好的 RNA 可用作 RT -PCR 反應的模板。

2 體外 RNA 反轉錄后模板 DNA 的去除：

2.1  在每含有 0.5 μg 模板 DNA 的反轉錄反應體系中加入 1U DNase I 。注意：在某些情況下， 模板 DNA 消化所需的 DNase I 的量需通過實驗進行摸索。

2.2 37°C  孵育 15min。

2.3  酚/氯仿抽提失活 DNase I。

3 缺口平移進行 DNA 標記

3.1  參考如下表格設置反應

* 3 dNTP Mixture (1mM each, without the labeled dNTP)：分別取除已經標記的 dNTP 外的 3 種 dNTP(100mM)  各 1 μl  加入到 97μl  的無核酸酶的去離子水中混勻即可 。例如標記的為 dATP，則需混合 dTTP、dCTP 和 dGTP 三種 dNTP 至每種的最終濃度為 1mM。配制好的 dNTP 可存放于 -20°C 以備后續使用。

** DNase I 可以用 1 ×  Reaction Buffer for DNA Polymerase I 進行稀釋。

Reaction Buffer (10 ×) for DNA Polymerase I ：   500mM Tris -HCl (pH7.5 at 25°C) ，   100mM MgCl2 ， 10mM DTT。

3.2  立即 15°C 孵育 15~60min。

3.3 上述反應體系中加入 1μl 0.5M EDTA(pH 8.0)終止反應。

3.4  從中取出少量例如 1 μl 檢測標記效率 。通常標記效率至少可以達到 108cpm/μg DNA。

3.5  可用 Sephadex G -50 或 Bio -Gel P -60 去除[α -32P]-dNTP，   以純化獲得標記的 DNA。

溫馨提示：

為了您的自身安全，使用試劑前，請做好防護，如穿實驗服， 帶手套等。