酵母細胞線粒體粗提分離試劑盒產(chǎn)品說明書 |
點擊次數(shù):758 更新時間:2022-08-23 |
主要用途
真菌/酵母細胞線粒體粗提分離試劑是一種旨在使用生物、化學和物理方法相結(jié)合,有效去除真菌/酵母菌細胞壁,進一步快速且充分裂解真菌/酵母菌細胞,從而分離出完整而純化的線粒體細胞器的而經(jīng)典的技術(shù)方法。該技術(shù)經(jīng)過精心研制、成功實驗證明的。適合于各種新鮮培養(yǎng)或凍存的野生型或突變型真菌/酵母菌菌株細胞的線粒體的制備。其制備物產(chǎn)量高,可以被用于細胞凋亡、信號傳遞、代謝和蛋白組學等研究。產(chǎn)品不含污染性蛋白酶和核酶,即到即用,性能穩(wěn)定,分離產(chǎn)量和純度堪稱同類產(chǎn)品*佳。
技術(shù)背景
線粒體細胞器的分離是現(xiàn)代細胞生物學研究的手段之一。從任何組織或細胞分離線粒體的技術(shù)方法基本上采用:第一,通過機械或化學方法破裂細胞;第二,通過低速差速離心去除殘渣碎屑和巨大細胞器;第三,通過高速差速離心獲得線粒體;甚至,第四,可以通過等密度離心獲得純度更高的線粒體。
產(chǎn)品內(nèi)容
清理液(Reagent A) 250毫升 平衡液(Reagent B) 250毫升 酶解液(Reagent C) 500微升 裂解液(Reagent D) 40毫升 凈化液(Reagent E) 10毫升 強化液(Reagent F) 5毫升 保存液(Reagent G) 100毫升 產(chǎn)品說明書 1份
保存方式
保存酶解液(Reagent C)和凈化液(Reagent E)在-20℃冰箱里,其余的保存在4℃冰箱里,嚴格避免污染;有效保證6月
用戶自備
15毫升錐形離心管:用于線粒體初步制備物的存放 50毫升錐形離心管:用于細胞收集后離心或清洗 1.5毫升離心管:用于保存線粒體 4℃臺式離心機:用于沉淀細胞 4℃臺式高速離心機:用于分離細胞器成分 恒溫水槽:用于孵育反應(yīng)物 DOUNCE勻漿器:用于裂解細胞
實驗步驟
實驗開始前,將試劑盒里的凈化液(Reagent E)凍融,然后移出1毫升凈化液(Reagent E)到4毫升的裂解液(Reagent D)里,混勻后,置入冰槽里,標記為裂解工作液。然后進行下列操作。
1. 準備好50毫升新鮮真菌/酵母菌樣品 2. 在分光光度儀上測OD600=1.0(1 OD=1 X 107細胞/毫升;總量為5 X 108細胞) 3. 轉(zhuǎn)移到預冷的50毫升錐形離心管 4. 放進4℃臺式離心機離心10分鐘,速度為3000g 5. 小心抽去上清液 6. 加入25毫升清理液(Reagent A),混勻 7. 放進4℃臺式離心機離心10分鐘,速度為3000g 8. 小心抽去上清液 9. 加入5毫升平衡液(Reagent B),混勻 10. 放進4℃臺式離心機離心10分鐘,速度為3000g 11. 小心抽去上清液 12. 加入2毫升平衡液(Reagent B),混勻 13. 加入50微升酶解液(Reagent C),混勻 14. 放進30℃恒溫水槽孵育60分鐘,期間每隔15分鐘輕輕用手搖勻 15. 加入5毫升平衡液(Reagent B),混勻 16. 放進4℃臺式離心機離心10分鐘,速度為3000g 17. 小心抽去上清液 18. 加入5毫升平衡液(Reagent B),混勻 19. 放進30℃恒溫水槽孵育30分鐘,繼續(xù)實驗步驟21 20. 同時將平衡液(Reagent B)置入冰槽里預冷30分鐘(注意:以下步驟在4℃環(huán)境下進行) 21. 放進4℃臺式離心機離心10分鐘,速度為3000g 22. 小心抽去上清液 23. 加入5毫升預冷的平衡液(Reagent B),混勻 24. 放進4℃臺式離心機離心10分鐘,速度為3000g 25. 小心抽去上清液 26. 加入5毫升含有裂解液(Reagent D)和凈化液(Reagent E)的裂解工作液 27. 渦旋震蕩5秒,充分混勻細胞顆粒群 28. 選擇下列其中一種方法:
方法一:物理處理法 1. 即刻放進預冷的DOUNCE勻漿器 2. 在冰槽里用勻漿幫勻化細胞(約20下)(注意:參見注意事項10) 3. 將所有細胞勻漿物移入15毫升錐形離心管 4. 放進4℃臺式離心機離心10分鐘,速度為1500g 5. 小心移出上清液到另一個新的預冷的15毫升錐形離心管——此步驟去除細胞核和未溶解的細胞 6. 放進4℃臺式高速離心機離心10分鐘,速度為10000g 7. 小心抽去上清液,保留沉淀顆粒——此步驟獲得線粒體沉淀物 8. (選擇步驟)加入3毫升預冷的保存液(Reagent G) 9. (選擇步驟)放進4℃臺式高速離心機再次離心5分鐘,速度為10000g 10. (選擇步驟)小心抽去上清液 11. 加入1毫升保存液(Reagent G),充分混勻 12. 即刻移入1.5毫升離心管,放進-70℃冰箱里
方法二:化學處理法 1. 在冰槽里孵育2分鐘,期間渦旋震蕩5秒一次 2. 加入500微升預冷的強化液(Reagent F) 3. 渦旋震蕩5秒,充分混勻 4. 在冰槽里孵育5分鐘,期間渦旋震蕩5秒二次(注意:參見注意事項11) 5. 加入5毫升預冷的保存液(Reagent G),輕輕搖動試管混勻 6. 放進4℃臺式離心機離心10分鐘,速度為1500g 7. 小心移出上清液到另一個新的預冷的15毫升錐形離心管——此步驟去除細胞核和未溶解的細胞 8. 放進4℃臺式高速離心機離心10分鐘,速度為10000g 9. 小心抽去上清液,保留沉淀顆粒——此步驟獲得線粒體沉淀物 10. (選擇步驟)加入3毫升預冷的保存液(Reagent G) 11. (選擇步驟)放進4℃臺式高速離心機再次離心5分鐘,速度為10000g 12. (選擇步驟)小心抽去上清液 13. 加入1毫升保存液(Reagent G),充分混勻 14. 即刻移入1.5毫升離心管,放進-70℃冰箱里
注意事項
1. 本產(chǎn)品為10次操作(50毫升菌液:1克細胞濕重或5 X 108細胞) 2. 其它實際操作的細胞量與試劑使用量按比例調(diào)整:例如10毫升菌液(OD600=1):試劑用量是標準用量的五分之一 3. 操作時,須戴手套 4. 操作時,避免污染母液 5. 50毫升(OD600=1)菌液濕重約1克 6. 細胞生長條件影響線粒體的質(zhì)量:建議在有氧條件下富含葡萄糖的培養(yǎng)基培養(yǎng) 7. 實驗步驟20以下的所有操作均須在4℃或以下狀態(tài)下進行 8. 建議使用足夠的細胞量 9. 建議嚴格控制操作時間 10. 通常勻化次數(shù)為20下(或細胞顆粒群消失為止)達到80%的細胞裂解為理想狀態(tài),但不同菌株的細胞會存在差異。用戶可以通過顯微鏡觀察3微升勻漿物的細胞裂解程度:完整細胞呈現(xiàn)發(fā)亮的圓環(huán)。低于50%可以增加勻化次數(shù) 11. 通常孵育5分鐘達到80%的細胞裂解為理想狀態(tài),但不同菌株的細胞會存在差異。用戶可以通過顯微鏡觀察3微升裂解物的細胞裂解程度:完整細胞呈現(xiàn)發(fā)亮的圓環(huán)。低于50%可以增加孵育時間和渦旋震蕩次數(shù) 12. 通常1克細胞濕重或5 X 108細胞的線粒體含量為50微克線粒體蛋白,但不同菌株或培養(yǎng)條件會存在差異;建議使用純化線粒體蛋白質(zhì)濃度定量測定試劑盒(HL10059)測定線粒體蛋白濃度 13. 如果需要計量線粒體,稀釋后數(shù)分鐘內(nèi)完成,否則線粒體將分解 14. 本產(chǎn)品所獲得的線粒體純度和產(chǎn)量尤為理想 15. 制備產(chǎn)物如果放在-70℃冰箱里儲存?zhèn)溆?/span>,嚴格避免反復凍融 16. 如果需要獲得95%以上純度的線粒體,使用真菌/酵母細胞線粒體分離(高純)試劑盒(HL10049.3) 17. 線粒體正常活性測定方法是: CITRATE SYNTHASE活性、氧化磷酸化、細胞色素吸收峰譜等 18. 線粒體內(nèi)外膜完整性測定方法是:CYTOCHROME C OXIDASE活性和熒光JC染色 19. 本公司提供線粒體套餐:ROS、NAO、MitoTRACK、JGB、線粒體溶解等 20. 本公司提供系列真菌/酵母細胞線粒體試劑產(chǎn)品
質(zhì)量標準
1. 本產(chǎn)品經(jīng)鑒定性能穩(wěn)定 2. 本產(chǎn)品經(jīng)鑒定分離的線粒體內(nèi)外膜完整 3. 本產(chǎn)品經(jīng)鑒定分離的線粒體維持正常活性 4. 本產(chǎn)品經(jīng)鑒定不含污染性蛋白酶和核酶
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